ГОСТ 32376-2013 Методы испытаний по воздействию химической продукции на организм человека. Метод оценки обратных мутаций на бактериях

Обозначение:
ГОСТ 32376-2013 Методы испытаний по воздействию химической продукции на организм человека. Метод оценки обратных мутаций на бактериях
Тип:
ГОСТ
Название:
Дата актуализации текста:
Дата актуализации описания:
71.100.01
Дата последнего изменения:
Дата завершения срока действия:
gost34440
gost_32376-2013.docx PHPWord

 

 

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СОВЕТ ПО СТАНДАРТИЗАЦИИ. МЕТРОЛОГИИ И СЕРТИФИКАЦИИ

(МГС)

INTERSTATE COUNCIL FOR STANDARDIZATION, METROLOGY AND CERTIFICATION

(ISC)

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ

СТАНДАРТ

МЕТОДЫ ИСПЫТАНИЯ ПО ВОЗДЕЙСТВИЮ
ХИМИЧЕСКОЙ ПРОДУКЦИИ НА ОРГАНИЗМ

ЧЕЛОВЕКА

Метод оценки обратных мутаций на бактериях

(OECD, Test №471:1997, IDT)

Издание официальное

Предисловие

Цели, основные принципы и порядок проведения работ по межгосударственной стандартизации
установлены в ГОСТ 1.0—92 «Межгосударственная система стандартизации. Основные положения» и
ГОСТ 1.2—2009 «Межгосударственная система стандартизации. Стандарты межгосударственные,
правила и рекомендации по межгосударственной стандартизации. Правила разработки, принятия,
применения, обновления и отмены»

Сведения о стандарте

Федеральным государственным унитарным предприятием «Всероссийский научно*
исследовательский центр стандартизации, информации и сертификации сырья, материалов и
веществ» (ФГУП «ВНИЦСМВ»)

За принятие проголосовали:

Краткое
наименование
страны по МК
(ИСО 3166) 004 - 97

Кол страны по МК
(ИСО 3166) 004 - 97

Сокращенное наименование
национального органа по
стандартизации

Армения

AM

Минэкономики Республики Армения

Беларусь

BY

Госстандарт Республики Беларусь

Киргизия

KG

Кыргызстандарт

Молдова

MD

Молдова-Стандарт

Россия

RU

Росстандарт

Таджикистан

TJ

Таджикстандарт

 

 

Перевод с английского языка (еп).

Степень соответствия - идентичная (IDT)

Информация об изменениях к настоящему стандарту публикуется е ежегодном
информационном указателе «Национальные стандарты». а текст изменений и поправок - е
ежемесячном информационном указателе «Национальные стандарты». В случае пересмотра
(замены) или отмены настоящего стандарта соответствующее уведомление будет
опубликовано в ежемесячном информационном указателе «Национальные стандарты».
Соответствующая информация, уведомление и тексты размещаются также в информационной
системе общего пользования - на официальном сайте Федерального агентства по техническому
регулированию и метрологии в сети Интернет

© Стандартинформ. 2014

В Российской Федерации настоящий стандарт не может быть полностью или частично
воспроизведен, тиражирован и распространен в качестве официального издания без разрешения
Федерального агентства по техническому регулированию и метрологии

Введение

Тест оценки обратных мутаций на бактериях проводят на зависимых от аминокислот штаммах
Salmonella typhimurium и Escherichia coli для оценки толковых мутаций, возникающих вследствие
замены пар оснований, вставки или делеции одной или нескольких пар оснований. Принцип метода -
определение обратных мутаций у исследуемых штаммов, которые позволяют микроорганизмам
синтезировать необходимую аминокислоту. Ревертангные бактерии выявляются по их способности
расти на среде в отсутствие аминокислоты, необходимой для роста исходного штамма бактерии.

Толковые мутации - причина многих генетинеских заболеваний человека. Имеются
убедительные данные, лто толковые мутации в онкогенах и генах опухолевой супрессии соматилесхих
клеток вовлелены в процесс онкогенеза у человека и экспериментальных животных. Тест оценки
обратных мутаций на бактериях не требует много времени, недорогой и относительно легок в
исполнении. Многие тест-штаммы несут ряд изменений, которые делают их более чувствительными
для выявления мутаций. Они включают: большую чувствительность последовательностей ДНК в сайтах
реверсии, повышенную клеточную проницаемость, элиминацию систем репарации ДНК или повышение
процесса склонной к ошибкам репарации ДНК. Специфичность тест-штаммов может дать полезную
информацию по типам мутаций, индуцируемых генотоксическим агентом. Накопленные данные по
результатам исследования широкого спектра структур показывают возможность использования метода
оценки обратных мутаций на бактериях. Разработаны методики для исследования химических
соединений с различными физико-химическими свойствами, включая летучие соединения.

ill

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

МЕЖГОСУДАРСТВЕННЫЙ СТАНДАРТ

МЕТОДЫ ИСПЫТАНИЯ ПО ВОЗДЕЙСТВИЮ ХИМИЧЕСКОЙ ПРОДУКЦИИ НА ОРГАНИЗМ

ЧЕЛОВЕКА

Метод оценки обратных мутаций на бактериях

Testing of chemicals of human health
Bacterial reverse mutation test

Дата введения — 2014—08—01

Настоящий стандарт устанавливает порядок проведения испытания химических веществ в тесте
оценки обратных мутаций на бактериях с применением прокариотных клеток, которые отличаются от
клеток млекопитающих такими особенностями, как поступление, метаболизм, структура хромосомы и
процессы репарации ДНК. Тестирования in vitro, как правило, требуют использование экзогенных
источников метаболической активации. Системы метаболической активации in vitro не могут
полностью имитировать условия метаболизма у млекопитающих in vivo. Таким образом, метод не
дает прямой информации по мутагенному и канцерогенному потенциалу химического вещества в
отношении млекопитающих.

Методы оценки обратных мутаций на бактериях обычно используются на начальном этапе
скрининга генотоксической активности, в особенности индукции точковых мутаций. Имеющиеся
многочисленные данные свидетельствуют о том. что большинство химических веществ, которые
выявили мутагенный эффект в данном тесте, показывают мутагенную активность в других тестах.
Имеются примеры мутагенных соединений, которые не были выявлены в данном тесте. Причина
этого явления может быть объяснена специфической природой определяемого события, различиями
в метаболической активации и биодоступности. С другой стороны, факторы, которые повышают
чувствительность метода оценки обратных мутаций у бактерий могут привести к переоценке
мутагенного потенциала тестируемого соединения.

Метод оценки обратных мутаций у бактерий может не подходить для оценки определенных
классов химических веществ, например, веществ с сильной бактерицидной активностью (некоторые
антибиотики) или веществ, которые специфически воздействуют на систему репликации в клетках
млекопитающих (ряд ингибиторов топоиэомераз и ряд аналогов нуклеозидов). В таких случаях более
адекватны тесты оценки мутагенности на млекопитающих.

Хотя многие соединения, которые показали мутагенный эффект в данном тесте являются
канцерогенами для млекопитающих, корреляция между двумя видами эффектов не абсолютна. Это
связано с классом химического вещества. Имеются канцерогены, которые не выявляются в данном
тесте, поскольку они действуют через другие негенотоксические механизмы или эти механизмы
отсутствуют в бактериальных клетках.

8 настоящем стандарте применены следующие термины с соответствующими определениями:

Издание официальное

Суспензию бактериальных клеток экспонируют с исследуемым веществом в присутствии или
отсутствии экзогенной системы метаболической активации. В методе введения вещества на чашку
(plate incorporation method) эта суспензия смешивается с верхним агаром и выливается сразу на
чашку с минимальной средой. 8 преинкубационном тесте, смесь предварительно инкубируют, затем
смешивают с верхним агаром и выливают на слой минимальной среды. При исследовании обоими
методами после инкубации два - три дня подсчитывают колонии ревертантов и сравнивают с числом
колоний ревертантов на чашке в контроле с растворителем.

Были описаны несколько методик оценки частоты обратных мутаций у бактерий. Среди них
наиболее часто ислользуются метод введения вещества на чашку, преинкубационный тест,
флуктуационный тест, и суспензионный метод.

Данный документ, преимущественно касается метода введения вещества на чашку и
преинкубационного теста. Оба подходят для проведения экспериментов с метаболическими
активациями и без них. Ряд веществ более эффективно исследовать в преинкубационном тесте. Эти
вещества относятся к химическим классам, которые включают короткие цепи алифатических
нитрозаминов. бивалентные металлы, альдегиды, азокрасители и диаэосоединения,
пиролиэидиноаые алкалоиды, аллилсодержащив соединения и нигросоединения. Также показано,
что некоторые классы мутагенов не всегда выявляются, при использовании стандартных процедур,
таких как метод введения вещества на чашку и преинкубационный тест. Они должны быть
рассмотрены как «особые случаи» и строго рекомендуется использование альтернативных методов
для их определения. К таким «особым случаям» могут быть отнесены (вместе с перечнем методов,
которые могут использоваться для их определения): азокрасители и диазосоединения, газообразные
и летучие химические вещества и гликозиды. Отклонение от стандартной процедуры должно быть
научно обосновано.

Свежие культуры бактерий должны быть выращены до состояния поздней экспоненциальной
или ранней стабильной фазы роста (приблизительно 10* клеток на 1 мл). Культуры в поздней
стабильной фазе не ислользуются. Необходимо, чтобы культуры, применяемые в эксперименте,
содержали высокий титр жизнеспособных бактерий. Титр может быть установлен либо из ранее
полученных данных кривой роста, либо в каждом опыте путем определения числа жизнеспособных
клеток в экспериментальном посеве.

Рекомендуемая инкубационная температура 37 С.

Необходимо использовать минимум пять штаммов бактерий. Они должны включать четыре
штамма Salmonella typhimurium (ТА1535: TA1S37 или ТА97; ТА96: ТА100), для которых показано, что
они дают надежный и воспроизводимый ответ в разных лабораториях. Эти четыре штамма Salmonella
typhimurium имеют GC пары оснований в первичном сайте реверсии. Это значит, что они не могут
выявлять ряд окисляющих мутагенов, соединения, вызывающие перекрестные сшивки, и гидразины.
Такие вещества могут быть обнаружены в опытах на Escherichia coli WP2 или Salmonella typhimurium
ТА102. у которых есть АТ пара оснований в первичном сайте реверсии.

Таким образом, рекомендуемая комбинация штаммов включает:

•Salmonella typhimurium ТА1535:

•Salmonella typhimurium TA1537 или TA97. или ТА97а;

•Salmonella typhimurium ТА98;

•Salmonella typhimurium TA100;

•Escherichia coti WP2 uvrA или Escherichia coli WP2 uvrA (рКМЮ1). или Salmonella typhimurium TA102.

Для определения мутагенов, вызывающих перекрестные сшивки, можно использовать штамм
Salmonella typhimurium ТА102 или профицитные по репарации штаммы Escherichia coli (например.
Escherichia coli WP2 или Escherichia coli WP2 (pKM101)).

Необходимы стандартные процедуры для ведения, хранения и проверки генотипов исходных
штаммов. Потребность аминокислоты для роста следует проверять для каждой замороженной
исходной культуры (гиститин для Salmonelia typhimurium и триптофан для Escherichia coli). Также
должны быть проверены другие фенотипические характеристики: присутствие или отсутствие
плазмид R-фактора для соответствующих штаммов (резистентность к ампицилину у штаммов ТА98.
ТА100 и ТА97а или ТА97. WP2 uvrA и WP2 uvrA (рКМ101) и резистентность к ампицилину +
тетрациклину у штамма ТА 102); присутствие специфических мутаций (rfa мутаций у штаммов

Salmonella typhimurium по контролю чувствительности к кристал л-виолету и uvrA мутации у
Escherichia coli или uvr8 мутации у Salmonella typhimurium по контролю чувствительности. Также
оценивается спонтанный уровень количества колоний ревертантов на чашку, который должен быть в
пределах колебаний показателя в историческом контроле лаборатории и желательно в пределах
колебания показателя по данным литературы.

Используются адекватные минимальный агар (например, содержащий Vogel-Bonner
минимальную среду Е и глюкозу) и верхний агар, содержащий гистидин и биотин или триптофан,
позволяющий пройти бактериям несколько клеточных делений.

Бактерии должны подвергаться воздействию испытуемого вещества в вариантах с присутствием
и отсутствием системы метаболической активации.

Обычно применяется система, включающая кофакторы и постмитохондриальную фракцию
печени крыс и грызунов, которым вводят активирующие ферменты соединения, такие как Ароклор
1254 или комбинацию Фенобарбитона и Р-нафтофлавона. Постмитохондриальную фракцию обычно
используют в диапазоне концентраций от 5 % до 30 % объема смеси S9.

выбор и условия системы метаболической активации может зависеть от класса испытуемого
химического вещества. В некоторых случаях возможно использование более одной концентрации.
Постмитохондриальные фракции обычно используются в пределах концентрации от 5 % до 30 % в
объемном отношении в S9-mix. митохондриальной фракции. Для азокрасителей и диазосоединений
может быть наиболее подходящей использование дедуктивной системы метаболической активации.

Перед исследованием твердое испытуемое вещество должно быть растворено или
суспендировано в подходящих растворителях или средах и разбавлено, если это необходимо.
Жидкие испытуемые вещества можно добавлять непосредственно в тест-системы и/или разбавлять
перед воздействия на бактерии. Следует использовать свежие препараты при отсутствии данных об
их стабильности при хранении.

Растворитель/среда не должны вступать в химическую реакцию с испытуемым веществом и не
должны влиять на выживаемость бактерий и активность S9. Если помимо стандартных используется
другой растворитель/среда. необходимы данные об их совместимости. Рекомендуется, где возможно,
применение воды в качестве раствора/среды. При исследовании нестабильных в воде веществ
используемые органические растворители не должны содержать воду.

важными критериями, принимаемыми во внимание при определении максимального количества
испытуемого вещества, являются цитотоксичность и растворимость в смеси. Рекомендуется в
предварительном эксперименте определить токсичность и растворимость. Цитотоксичность может
быть оценена по снижению числа колоний ревертантов на чашку, отсутствием или уменьшением
фонового газона или степенью выживаемости обработанных культур. Цитотоксичность вещества
может меняться в присутствии системы метаболической активации. Нерастворимость выявляется как
преципитация в конечной смеси в реальных условиях, выявляемая невооруженным глазом.

Рекомендуемая максимальная концентрация для растворимых нецитотоксичных веществ 5
мг/чашка или 5 мкл/чашка. Для нецитогоксичкых веществ, которые не растворимы в концентрациях
5 мг/чашка или 5 мкл/чашка. одна или более испытуемых концентраций должны быть нерастворимы в
конечной тестируемой смеси. Вещества, которые цитотоксичны в концентрациях менее 5 мг/чашка
или 5 мкл/чашка. должны быть испытаны на цитотоксичную концентрацию, вещества, цитотоксичные
в концентрациях ниже 5 мг/чашка или 5 мкл/чашка должны быть тестированы в диапазоне до
цитотоксической концентрации. Преципитат не должен мешать подсчету.

Как минимум 5 разных анализируемых концентраций испытуемого вещества должны
использоваться приблизительно с шагом в половину log (ч'Ю) между тестируемыми точками для
начального эксперимента. Меньшие интервалы могут быть использованы в тех случаях, когда
исследуется зависимость «концентрация-эффект».

Исследование веществ с концентрацией выше 5 мг/чашка или 5 мкл/чашка может быть
проведено, если тестируемые вещества содержат значительное количество потенциально
мутагенных примесей.

Соответствующие штамм-специфичные положительные и отрицательные (растворитель/среда)
контроли. как в присутствии метаболической активации так и без нее. должны быть включены в
каждое исследование. Должны быть отобраны концентрации положительных контролей. которые
показывают эффективность ответа соответствующего штамма бактерий и системы метаболической
активации.

Для вариантов с использованием системы метаболической активации, соединение
положительного контроля следует отбирать с учетом типа бактериального штамма.

Таблица 1 - Примеры веществ для положительного контроля в вариантах с метаболической
активацией.

Вещество

CAs N»

EInECs Mb

9.10-диметила нтра цен

781-43-1

212-308-4

7.12-димети лбенз1а1антоаиен

57-97-6

200-359-5

БенэоГа}пирен

50-32-8

200-028-5

2-аминоантрацен

613-13-8

210-330-9

Ыиклофосфамид

50-18-0

 

Циклофосфамид моногидрат

6055-19-2

200-015^

 

 

Таблица 2 - Примеры штамм-специфичных соединений для положительного контроля в
вариантах без метаболической активации.

Вещество

6А5 №

EINECS N*

Штамм

Азид натрия

26628-22-8

247-852-1

ТА 1535 и ТА 100

2-нитооФлуаоен

607-57-8

210-138-5

ТА 98

9-аминоакридин

90-45-9

201-995-6

ТА 1537. ТА 97 и ТА 97а

ICR191

17070-45-0

241-129-4

ТА 1537. ТА 97 и ТА 97а

Кумен гидоопеооксид

80-15-9

201-254-7

ТА 102

Митомицин С

50-07-7

200-008-6

WP2 uvrA и ТА102

N-3T»vi-N-HHTpo-N-

нитрозогуанидин

70-25-7

200-730-1

WP2. WP2uvrA и
WP2uvrA(pKM101)

4-нитрохиколин-1 -оксид

56-57-5

200-281-1

WP2. WP2uvrA и
WP2uvrA(pKM101)

Фуоилфурамид (AF2)

3688-53-7

 

Плазмидосодеожащие штаммы

 

 

Могут быть использованы для положительного контроля другие адекватные вещества.
Использование других химических соединений, если такие имеются, из класса известных
положительных контролей допустимо.

Должны быть включены отрицательные коктроли с растеорителем/срвдой без исследуемого
вещества при введении тем же способом, что и экспериментальные варианты. К тому же
отрицательные контроли при сравнении с контролем, полученным в предыдущих экспериментах,
могут показать, что побочные или мутагенные эффекты не индуцированы выбранным растворителем.

В методе введения вещества на чашку в варианте без метаболической активации обычно 0,05
мл или 0.1 мл раствора исследуемого вещества. 0.1 мл свежей бактериальной культуры
(содержащей, приблизительно. 10е жизнеспособных клеток) и 0.5 мл стерильного буферного раствора
смешивается с 2.0 мл верхнего агара. В варианте с метаболической активацией обычно 0.5 мл
микросомальной активирующей смеси, содержащей адекватное количество постмитохондриальной
фракции [в диапазоне от 5 % до 30 % (объем) общей микросомальной активирующей смеси}
смешивается с верхним агаром (2.0 мл) вместе с бактериями и раствором исследуемого вещества.
Содержимое каждой пробирки смешивается и выливается на чашку на поверхность минимального
агара. Верхнему агару нужно дать затвердеть перед инкубацией.

В преинкубационном тесте раствор вещества предварительно инкубируют с опытным штаммом
бактерий (содержащим, приблизительно. 10е жизнеспособных клеток) и стерильным буфером или
микросомальной активирующей смесью (0.5 мл). Обычно смесь инкубируют в течение 20 мин или
более при 30-37 С перед смешиванием с верхним агаром и выливанием на поверхность
минимального агара. Обычно. 0.05 или 0.1 мл раствора испытуемого вещества. 0.1 мл бактерий, и 0.5
мл смеси S9 или стерильного буферного раствора смешивается с 2.0 мл верхнего агара. Пробирки
должны быть аэрированы во время преинкубации с помощью аппарата для встряхивания.

Для адекватной оценки изменчивости следует использовать для каждого уровня доз 3 чашки.
Использование 2 чашек возможно, если научно обосновано. Случайная потеря чашки не обязательно
делает опыт недействительным.

Газообразные или летучие вещества должны быть испытаны подходящими методами,
например, в закрытом сосуде.

Все пластинки в эксперименте должны быть инкубированы при 37 С е течение 48-72 ч. После
инкубационного периода, подсчитывают число колоний ревертантов на чашку.

Данные должны быть представлены как число колоний ревертантов на чашку. Должно быть
приведено число колоний ревертантов на чашку как в вариантах с отрицательным (контроль с
растворителем и. если используется, необработанный контроль), так и с положительным контролем.

Число колоний ревертантов на каждую чашку, среднее число колоний на чашку и стандартное
отклонение приводится для каждой дозы исследуемого вещества, положительного и отрицательного
(необработанного и/или с растворителем) контролей.

Не требуется проверка четкого положительного результата. Сомнительные результаты следует
уточнить в дальнейших исследованиях, используя модификацию условий тестирования.
Отрицательные результаты нуждаются в подтверждении в каждом конкретном случае. Если
подтверждение отрицательного результата не требуется, должно быть предусмотрено научное
обоснование.

Модификация параметров исследования, направленная на расширение предела условий,
должна проводиться в последующих экспериментах. Параметры исследования, которые могут быть
модифицированы, включают: интервал концентраций, метод обработки (введение вещества на чашку
или преинкубация в жидкости) и условия метаболической активации.

Существуют различные критерии для определения положительного результата, такие как
зависимое от концентрации увеличение эффекта в исследуемом диапазоне концентраций и/или
воспроизводимое увеличение числа колоний ревертантов на чашку при одной или более
концентрациях, как минимум, на одном штамме с системой метаболической активации или без нее.
Биологическая значимость результатов должна быть рассмотрена в первую очередь. Статистические
методы могут использоваться при оценке результатов испытания. Однако статистическая значимость
не должна быть единственным определяющим фактором для заключения о положительном эффекте.

Испытуемое вещество, результаты исследования которого не соответствуют вышеупомянутым
критериям, рассматриваются как не мутагенные в данном тесте.

Хотя в большинстве экспериментов получаются четкие положительные или отрицательные
результаты, в редких случаях, совокупность данных будет исключать определенную оценку об
активности испытуемого вещества. Результаты могут оставаться сомнительными или
проблематичными независимо от числа повторов эксперимента.

Положительные результаты в тесте оценки обратных мутации на бактериях свидетельствуют о
том. что вещество индуцирует точковые мутации типа замены пар оснований или сдвига рамки
считывания в геноме Salmonella typhimurium и/или Escherichia coll. Отрицательные результаты
показывают, что в условиях опыта испытуемое вещество является не мутагенным для тестируемых
видов.

•идентификационные данные и CAS по (если известны);

-физическая природа и чистота:

-физико-химические свойства, относящиеся к проведению исследования;

•стабильность соединения (если известна).

Растворитель/среда:

•обоснование выбора растворителя/среды;

•растворимость и стабильность испытуемого вещества в растворителе/среде (если известно).
Штаммы:

•используемые штаммы;

•число клеток на культуру;

•характеристики штаммов.

Условия испытания:

•количество испытуемого вещества на чашку (мг/чашка или мкг/чашка) с обоснованием выбора
дозы и числа чашек на концентрацию;

•используемая среда;

•тип и состав системы метаболической активации, включающей критерий приемлемости;

«процедуры обработки.

Результаты:

•признаки токсичности:

•признаки преципитации:

•количество колоний ревертантое на каждую чашку;

•среднее число колоний ревертантое на чашку и стандартное отклонение:

•зависимость эффекта от дозы, где возможно:

•статистическая обработка, если есть:

•данные по отрицательным (растворитель/среда) и положительным контролем, с пределами
колебаний, средними и стандартными отклонениями;

•данные по ранее полученным (лабораторным) отрицательным (растворитель/среда) и
положительным контролям: диапазоны колебаний, средние и стандартные отклонения.

Библиография

УДК 661:615.099:006.354 МКС 71.100.01.13.100

Ключевые слова: химическая безопасность, мутагенность, учет обратных мутаций у бактерий.

Подписано в печать05.11.2014. Формат 60x84
Уел. печ. л. 1,40. Тираж 32 экз. За*. 3992.

Подготовлено на основа электронной версии, предоставленной разработчиком стандарта

ФГУП «СТАНДАРТИНФОРМ»

123995 Москва. Гранатный пер.. 4.
www.gostinfo.ru info@gostinfo.ru

Впервые эта аббревиатура появилась во времена СССР, и расшифровывается она как Государственный Стандарт. Со временем количество госстандартов увеличилось, и за их несоблюдение нарушителям грозила уголовная ответственность. Сегодня наблюдается тенденция к сокращению национальных стандартов.

ГОСТ - это государственный стандарт, свод сформулированных требований, предъявляемых государством к качеству и безопасности продукции, работ и услуг межотраслевого значения. Стандарты, подтверждающие, что они прошли проверку и отвечают всем требованиям безопасности, устанавливаются с учетом современных достижений науки, технологий и опыта.

Зачем нужен ГОСТ

ГОСТы призваны регламентировать, какие качества должны быть у продукции, вырабатываемой и продаваемой на территории конкретной страны. В наше время есть госстандарты, касающиеся любой отрасли промышленности и других сфер нашей жизни. Их задача – установить правила по изготовлению:

  • инструментов
  • продуктов питания
  • одежды и обуви
  • транспорта и всего того, без чего жизнь человека невозможна

В госстандартах указываются продукты, которые можно использовать, возможные методы производства, оборудование, на котором будет производиться изделие, технологии, по которым все это должно производиться, и т.д. Госстандарты, принятые в Российской Федерации, в своем названии, кроме аббревиатуры ГОСТ, имеют букву «Р». Это правила сертификации, на основании которых осуществляются самые разные процедуры, включая экспертизу, процессы и разные способы.

Обязательно ли соблюдать нормативы документа

Их соблюдение было обязательным до 1 сентября 2011 г. В то время считалось, что это поможет держать под контролем качество производимых товаров, а значит защищать здоровье и жизнь населения, животных, растений и пр. Однако с этого дня соблюдение ГОСТов не обязательно, оно носит добровольный характер.

Каждый может сам выбирать и покупать товары, по ГОСТу ли они выработаны или без них. И производитель может решить – изготавливать товар по ГОСТу или по ТУ. Но при этом придется учесть, что многие ГОСТы создавались в эпоху натуральной, а не модифицированной продукции. Но речь не о производственных и других сферах, напрямую касающихся жизни и здоровья людей, использовании стандартов для оборонной продукции или защиты данных, которые составляют государственную тайну или другой информации ограниченного доступа В РФ ГОСТы принимает Госстандарт России. В сфере строительства и промышленности, строительных материалов - Госстрой. Но современный мир пытается перейти на технические регламенты.

Отличие ГОСТ от других стандартов

  • ОСТ. Этот стандарт, который устанавливает требования к качеству продукта в конкретной сфере, разрабатывается там, где нет ГОСТов, или их требования нужно уточнять
  • ТУ. В ходе перехода экономики к рыночным отношениям в обиход вошли технические условия - ТУ. Их цель заключается в регламентировании производство продукции, не попадавшей под действие ГОСТа. Требования ТУ, создаваемых предпринимателями-производителями, не должны противоречить обязательным требованиям ГОСТов
  • Технический регламент. Он устанавливает обязательные условия хранения продукции, ее перевозки и продаж. Главное отличие ГОСТа от ТР заключается в том, что госстандарт характеризуется количественными параметрами выпускаемых изделий, а ТР – условиями применения готовой продукции

Похожие госты